References

helmholtzeyeinstitute

Российский офтальмологический журнал

Russian Ophthalmological Journal

2072-00762587-5760

Real time Publishers

10.21516/2072-0076-2016-9-1-98-104

helmholtzeyeinstitute-16

Research Article

ОБЗОРЫ ЛИТЕРАТУРЫ

REVIEWS

РОЛЬ ВИРУСА ГЕРПЕСА ЧЕЛОВЕКА 6 ТИПА (ВГЧ-6) В ОБЩЕЙ ПАТОЛОГИИ И ПРИ ЗАБОЛЕВАНИЯХ ГЛАЗ

The Role of Human Herpesvirus-6 (HHV-6) in General Pathology and Ocular Inflammatory Disorders

Кричевская

Г. И.

Krichevskaya

G. I.

noemail@neicon.ru

ФГБУ «Московский НИИ глазных болезней им. Гельмгольца» Минздрава РоссииРоссияHelmholtz Research Institute of Eye Diseases, Moscow, RussiaRussian Federation

2016

03102018

9198104

2018

Кричевская Г.И.

Krichevskaya G.I.

Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

https://roj.igb.ru/jour/article/view/16

В статье обобщены современные данные о ВГЧ-6: распространенности, путях заражения, клинических проявлениях при первичной и реактивации хронической инфекции, роли в этиопатогенезе лимфопролиферативных заболеваний, злокачественных опухолей, поражения центральной нервной системы, ДРЕСС-синдрома, воспалительных заболеваний глаза (кератитов, увеитов, ретинитов, невритов зрительного нерва), методах и критериях оценки результатов лабораторной диагностики, лечении // Российский офтальмологический журнал, 2016; 1: 98-104.

The paper summarizes current data on HHV-6: prevalence, modes of transmission, clinical manifestations of the primary infection and the reactivation of chronic infection, the role played in the pathogenesis of lymphoproliferative diseases, malignant tumors, CNS, DRESS-syndrome, inflammatory diseases of the eye (keratitis, uveitis, retinitis, optic neuritis) in children and adults, the methods of laboratory diagnosis and treatment // Russian Ophthalmological Journal, 2016; 1: 98-104.

ВГЧ-6первичная инфекцияреактивация персистентной инфекцииклинические синдромыполимеразная цепная реакцияиммуноферментный анализкератитыувеитыретинитыневриты зрительного нерваHHV-6primary infectionreactivation of a persisting infectionclinical syndromesPCRELISAkeratitisuveitisretinitisoptic nerve neuritis

References1

Salahudin S.Z., Ablashi D.V., Markham P.D. et al. Isolation оf a new virus (HBLV) in patients with lymphoproliferative disorders. Science. 1986; 234(4776): 596-601.

Львов Н.Д., Мельниченко А.В., Никитина А.А., Ахмедова Г.Н. Современный взгляд на лимфопролиферативную герпесвирусную иммунопатологию человека. Научно-практическая ревматология. 2008; 1: 49-53.

Перминова Н.Г., Тимофеев И.В., Палецкая Т.Ф., Максютов А.З., Кожина Е.М. Вирус герпеса 6-го типа (HHV-6): современное состояние вопроса. Вестник РАМН. 1998; 4: 21-4. Perminova N.G., Timofeev I.V., Paletskaya T.F., Maksyutov A.Z., Kozhina E.M. Herpes virus 6 type (HHV-6): current status of the issue. Vestnik RAMN. 1998; 4: 21-4. (in Russian).

Л.В.Вашура М., Савенкова С. Герпес 6-го типа (эпидемиология, диагностика, клиника). Лечащий врач; 2014;11: 3-8.

Абатуров А.Е., Шостакович-Корецкая Л.Р. HHV-6-инфекция у детей. Здоровье ребенка. 2007; 3(6): 5-10.

Dockrell DH. Human Herpesvirus 6: molecular biology and clinical features. J. Ved. Microbiol. 2003; 52(1):.5-18.

Ablashi D., Agut H., Alvarez-Lafuente R. et al. Classification of HHV-6A and HHV-6B as distinct viruses. Arch Virol. 2014; 159(5): 863-7.

Hudnall D., Chen T., Allison P., Tyring S., Heath A. Herpesvirus prevalence and viral load in healthy blood donors by quantitative real-time polymerase chain reaction. Transfusion. 2008; 48(6): 1180-7.

Géraudie B., Charrier M., Bonnafous P., et al. Quantitation of human herpesvirus-6A, 6-B and -7 DNAs in whole blood, mononuclear and polymorphonuclear cell fractions from healthy blood donors. J. Clin. Virol. 2012; 53(2): 151-5.

Bajric J., Smith W.M. A case of bilateral human herpesvirus 6 panuveitis with genomic viral DNA integration. J. Inflamm. Infect. 2014; 19: 4-16.

Bell A.J., Gallagher A., Mottram T., et al. Germ-Line Transmitted, Chromosomally Integrate HHV-6 and Classical Hodgkin Lymphoma. PloS One. 2014; 9(11): 11242.

Caserta M.T., Hall C.B., Canfield R.L., et al. Early developmental outcomes of children with congenital HHV-6 infection. Pediatrics. 2014; 134(6): 1111-8.

Leong H.N., Tuke P.W., Tedder R.S., et al. The prevalence of chromosomally integrated human herpesvirus 6 genomes in the blood of UK blood donors. J. Med. Virol. 2007; 79(1): 45-51.

Nacheva E.P., Ward K.N., Brazma D., et al. Human herpesvirus 6 integrates within telomeric regions as evidenced by five different chromosomal sites. J. Med. Virol. 2008; 80(11): 1952-8.

Magalhäes I.M., Martins R.V, Cossatis J.J., et al. Detection of human herpesvirus 6 and 7 DNA in saliva from healthy adults from Rio de Janeiro, Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2010; 106(7): 925-7.

Ando Y., Kakimoto K., Ekunu Y. HHV-6-infection during pregnancy and spontaneous abortion. Lancet. 1992; 340(8830): 1289.

Zerr D.M., Meier A.S., Selke S.S., et al. A population-based study of primary human herpesvirus 6 infection. N. Engl J. Med. 2005; 352(8): 768-76.

Ogata M. Human Herpesvirus 6 in Hematological Malignancies. Review. J. Clin Exp Hematol. 2009; 49(2): 57-67.

Leibovitch E., Wohler J.E., Cummings Macri S.M., et al. Novel marmoset (Callithrix jacchus) model of human Herpesvirus 6A and 6B infections: immunologic, virologic and radiologic characterization. PLoS Pathog. 2013; 9 (1): e 1003138.

Chen Y.C., Chiang H.H., Cho Y.T, et al. Human herpes virus reactivations and dynamic cytokine profiles in patients with cutaneous adverse drug reactions - a prospective comparative study. Allergy. 2015; 70(5): 568-75.

Caserta M.T., Hall C.B., Schnabel K., et al. Diagnostic assays for active infection with human herpesvirus 6 (HHV-6). J. Clin Virol. 2010; 48(1): 55-7.

Wiersbitzky S., Bruns R., Wiersbitzky H. Infection with herpesvirus 6-really only “exanthema subitum”? Part 2: Rare or unknown disease pictures. Fortschr Med. 1992; 110 (33): 617-20.

Politou M., Koutras D., Kaparos G., et al. Seroprevalence of HHV-6 and HHV-8 among blood donors in Greece. Virol J. 2014; 11: 153.

Saddawi-Konefka R., Crawford J.R. Chronic Viral Infection and Primary Central Nervous System Malignancy. J Neuroimmune Pharmacol. 2010; 5(3): 387-403.

Ogata M., Satou T., Kawano R., Yoshikawa T., et al. High incidence of cytomegalovirus, human herpesvirus-6, and Epstein-Barr virus reactivation in patients receiving cytotoxic chemotherapy for adult T cell leukemia. J. Med Virol. 2011; 83(4): 702-9.

Yoshikawa T. Human herpesvirus-6 аnd -7 infections in transplantation. Pediatr. Transplant. 2003; 7(1):11-7.

Ogata M., Kikuchi H., Satou T., et al. Human herpesvirus 6 DNA in plasma after allogenic stem cells transplantation: incidence and clinical significance. J Infect. Dis. 2006; 193(1): 68-79.

Lautenschlager I., Razonable R.R. Human herpesvirus-6 infections in kidney, liver, lung, and heart transplantation: review. Transpl Int. 2012; 25(5): 493-50.

Maslin J., Bigaillon C., Froussard F., Enouf V., Nicand E. Acutе bilateral uveitis associated with an acute human herpesvirus-6 infection. J. Infect. 2007; 54(4): 237-40.

Cohen J.I., Fahle G., Kemp M.A., Apakupakul K., Margolis T.P. Human herpesvirus 6-A, 6-B, and 7 in vitreous fluid samples. J Med Virol. 2010; 82(6): 996-9.

Oberacher-Velten I.M., Jonas J.B., Jünemann A, Schmidt B. Bilateral optic neuropathy and unilateral tonic pupil associated with acute human herpesvirus 6 infection: a case report. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2005; 243(2): 175-7.

Papageorgiou E., Ch'ng S., Kulkarni A., Anwar S., Empeslidis T. Fourth cranial nerve palsy and bilateral acute retinal necrosis following human herpesvirus 6-infection of the central nervous system. Ocul Immunol Inflamm. 2014; 22(3): 228-32.

Nahdi I., Abdelwahed R.B., Boukoum H., et al. Herpesvirus detection and cytokine levels (IL-10, IL-6, and INF-γ) in ocular fluid from Tunisian immunocompetent patients with uveitis. J. Med. Virol; 2013; 85(12): 2079-86.

Sugita S., Shimizu N., Watanabe K., et al. Use of multiplexs PCR and real-time PCR to detect human herpes virus genome in ocular fluids of patients with uveitis. Br. J. Ophthalmol. 2008; 92(7): 928-32.

Sugita S., Shimizu N., Kawaguchi T. Virological analysis in patients with human herpes virus 6-associated ocular inflammatory disorders. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2012; 53(8): 4692-8.

Okuno T., Hooper L.C., Ursea R., et al. Human herpes virus 6 in corneal inflammation alone or with human herpesviruses. Cornea. 2011; 30(2): 204-7.

Qavi H.B. Possible role of HHV-6 in the enchanced severity of HHV-1 keratitis. In Vivo. 1999; 13(5): 427-32.

Слепова О.С., Светлова Е.В., Ковалева Л.А. и др. ПЦР-исследование на вирус герпеса человека 6 типа и другие вирусы группы герпеса при заболеваниях глаз. В кн.: Тезисы научно-практической конференции офтальмологов с международным участием, посвященной 50-летнему юбилею кафедры глазных болезней медицинского института РУДН. Москва: РУДН; 2015: 133-134.

Миронкова Е.А., Макаров П.В., Слепова О.С. и др. Инфицированность донорского материала вирусами группы герпеса как возможная причина развития болезни трансплантата при сквозной кератопластике. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2012: XIV(4): 48-51.

Миронкова Е.А., Демкин В.В.,Слепова О.С. и др. Диагностика и роль ВГЧ-6 инфекции при кератопластике высокого риска. Российский офтальмологический журнал. 2012; 5(3): 30-4.

Cлепова О.С., Миронкова Е.А.,Макаров П.В. и др. Инфицированность роговиц донора и /или реципиента вирусами группы герпеса как возможная причина развития болезни трансплантата при сквозной кератопластике. В кн.: Ерошевские чтения. Труды Всероссийской конференции. Самара. 2012; 272-4.

Malamos P., Maselos S., Andrianopoulos K., et al. Human herpesvirus 6 as a cause of recurrent posterior uveitis in a HIV-positive patient. Retin Cases Brief Rep. 2013; 7(2): 131-3.

Méchaï F., Boutolleau D., Manceron V., et al. Human herpesvirus 6-associated retrobulbar optic neuritis in a HIV-infected patient: response to anti-herpesvirus therapy and long-time outcome. J. Med Virol. 2007; 79(7): 931-4.

Wiersbitzky S., Ratzman G.W., Bruns R., Wiersbitzky H. Reactivation in children of juvenile chronic arthritis and chronic iridocyclitis associated with human herpesvirus-6 infection. Pediatr Grenzgeb. 1993; 31(4): 203-5.

Stewart M.W. Herpetic (non-cytomegalovirus) retinal infections in patients with the acquired immunodeficiency syndrome. Curr Hiv Res. 2013; 11(3): 210-9.

Shcauer P., Salaun N., Razin S., Labrouze J.M., Bourguignon G. DRESS-syndrome with bilateral panuveitis, elevated intraocular pressure, and HHV-6 reactivation: a case report. J. Fr Ophtalmol; 2006: 29(6): 659-64.

Glatre F., Rousseau E., Bacin F. Unilateral uveitis with HHV-6 positive polymerase chain reaction in aqueous humor for an etanercept-treated woman: a case report. J Fr Ophthalmol. 2010; 33(8): 561-63.

Yokogawa H., Kobayashi A., Yamazaki N., Sugiyama K. Identification of cytomegalovirus and human herpesvirus-6 DNA in a patients with corneal endotheliitis. Jpn J Ophthalmol. 2013; 57(2): 185-90.

Tacyildiz N., Dincaslan H.U., Ozdemir H. The seroprevalence of Kaposi's sarcoma associated herpes virus and human herpes virus-6 in pediatric patients with cancer and healthy children in a Turkish pediatric oncology center. 2014;35(3): 221-5.

Achour A., Boutolleau D., Slim A., Agut H., Gautheret-Dejean A. Human herpesvirus-6 (HHV-6) DNA in plasma reflects the presence of infected blood cells rather than circulating viral particles. J Clin Virol 2007; 38(4): 280-5.

Agut H., Bonnafous P., Gautheret-Dejean A. Laboratory and Clinical Aspects of Human Herpesvirus 6 Infections. Clin Microbiol Rev. 2015; 28(2): 313-35.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.