Preview

Российский офтальмологический журнал

Расширенный поиск

Ангиогенные свойства катехоламинов в аспекте патогенеза ретинопатии недоношенных

https://doi.org/10.21516/2072-0076-2018-11-4-49-54

Полный текст:

Аннотация

Цель — оценить уровень норадреналина и дофамина в сетчатке крысят с экспериментальной ретинопатией недоношенных (ЭРН) на сроке, соответствующем пику неоваскуляризации в оригинальной модели заболевания.
Материал и методы. Исследование выполнено на 41 крысенке породы вистар (82 глаза). Крысята были разделены на 2 группы: опытную (крысята с ЭРН, n = 21) и контрольную (n = 20). С целью воспроизведения ЭРН новорожденных крысят на 14 сут помещали в инкубатор вместе с родившей их самкой. Каждые 12 ч концентрация кислорода в инкубаторе колебалась от 60 до 15 %. Контрольную группу составили крысята, находившиеся с момента рождения в условиях с нормальным содержанием кислорода (21 %). Крысят выводили из эксперимента на 10-е, 14-е, 23-и и 28-е сутки и проводили бинокулярную энуклеацию с последующим гистологическим исследованием глазных яблок. В образцах сетчатки глаз, полученных на 23-и сутки, определяли содержание норадреналина и одного из метаболитов дофамина — L-ДОФА методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с электрохимической детекцией.

Результаты. По данным гистологического исследования, в разработанной нами модели ЭРН пик неоваскуляризации соответствует 23-м суткам эксперимента. На данном сроке у крысят с ЭРН ретинальный уровень L-ДОФА был достоверно ниже контрольных значений (13,99 и 30,5 нг/г соответственно), а уровень норадреналина достоверно превышал последние (63,7 и 7,69 нг/г соответственно).

Заключение. В период наивысшей сосудистой активности в сетчатке глаз крысят с ЭРН отмечается относительный дефицит дофамина и относительный избыток норадреналина. Полученные данные свидетельствуют об антиангиогенных свойствах дофамина и проангиогенных свойствах норадреналина во вторую фазу развития ЭРН.

Об авторах

Л. А. Катаргина
ФГБУ «Московский НИИ глазных болезней им. Гельмгольца»
Россия

д-р мед. наук, профессор, заместитель директора

105062, Москва, ул. Садовая-Черногрязская, д. 14/19



И. П. Хорошилова-Маслова
ФГБУ «Московский НИИ глазных болезней им. Гельмгольца»
Россия

д-р мед. наук, профессор, начальник отдела патологической анатомии и гистологии

105062, Москва, ул. Садовая-Черногрязская, д. 14/19



Н. С. Бондаренко
ФГБУН «Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова» РАН
Россия

научный сотрудник лаборатории нервных и нейроэндокринных регуляций

119334, Москва, ул. Вавилова, д. 26



Ю. О. Никишина
ФГБУН «Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова» РАН
Россия

научный сотрудник лаборатории нервных и нейроэндокринных регуляций

119334, Москва, ул. Вавилова, д. 26



А. Р. Муртазина
ФГБУН «Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова» РАН
Россия

аспирант лаборатории нервных и нейроэндокринных регуляций

119334, Москва, ул. Вавилова, д. 26



А. М. Майбогин
ФГБУ «Московский НИИ глазных болезней им. Гельмгольца»
Россия

врач-патологоанатом отдела патологической анатомии и гистологии 

105062, Москва, ул. Садовая-Черногрязская, д. 14/19



Н. А. Осипова
ФГБУ «Московский НИИ глазных болезней им. Гельмгольца»
Россия

врач-офтальмолог отдела патологии глаз у детей

105062, Москва, ул. Садовая-Черногрязская, д. 14/19



А. Ю. Панова
ФГБУ «Московский НИИ глазных болезней им. Гельмгольца»
Россия

аспирант отдела патологии глаз у детей

105062, Москва, ул. Садовая-Черногрязская, д. 14/19



Т. В. Судовская
ФГБУ «Московский НИИ глазных болезней им. Гельмгольца»
Россия

д-р мед. наук, врач-офтальмолог детского поликлинического отделения

105062, Москва, ул. Садовая-Черногрязская, д. 14/19



М. В. Угрюмов
ФГБУН «Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова» РАН
Россия

академик РАН, д-р биол. наук, профессор, заведующий лабораторией нервных и нейроэндокринных регуляций

119334, Москва, ул. Вавилова, д. 26



Список литературы

1. Катаргина Л.А., Слепова О.С., Демченко Е.Н., Осипова Н.А. Роль системного дисбаланса цитокинов в патогенезе ретинопатии недоношенных. Российская педиатрическая офтальмология. 2015; 4: 16–20. Katargina L.A., Slepova O.S., Demchenko E.N., Osipova N.A. The role of the systemic disbalance of serum cytokine levels in pathogenesis of retinopathy of prematurity. Rossijskaja pediatricheskaja oftal'mologija. 2015; 4: 16–20 (in Russian).

2. Sarkar C., Chakroborty D., Basu S. Neurotransmitters as regulators of tumor angiogenesis and immunity: the role of catecholamines. J. Neuroimmune Pharmacol. 2013; 8 (1): 7–14. doi: 10.1007/s11481-012-9395-7

3. Zhang N., Favazza T.L., Baglieri A.M., et al. The rat with oxygeninduced retinopathy is myopic with low retinal dopamine. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2013; 54 (13): 8275–84. doi: 10.1167/iovs.13-12544

4. Tilan J., Kitlinska J. Sympathetic neurotransmitters and tumor angiogenesis-link between stress and cancer progression. J. Oncol. 2010; 2010: 539706. doi: 10.1155/2010/539706

5. Ugrumov M.V. Developing brain as an endocrine organ: a paradoxical reality. Neurochemical research. 2010; 35 (6): 837–50. doi.org/10.1007/s11064-010-0127-1

6. Катаргина Л.А., Чеснокова Н.Б., Безнос О.В., Осипова Н.А., Витер Б.В. Экспериментальное исследование патогенеза ретинопатии недоношенных как перспективное направление поиска новых медикаментозных подходов к ее профилактике и лечению. Российский офтальмологический журнал. 2016; 9 (1): 68–72. Katargina L.A., Chesnokova N.B., Beznos O.V., Osipova N.A., Viter B.V. An experimental study of the pathogenesis of retinopathy of prematurity as a promising direction of search for new medicinal approaches to its prevention and treatment. Russian ophthalmological journal. 2016; 9 (1): 68–72 (in Russian).

7. Катаргина Л.А., Хорошилова-Маслова И.П., Майбогин А.М., Панова И.Г., Осипова Н.А. Патоморфологические особенности развития экспериментальной ретинопатии недоношенных. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2017; 3 (2): 190–4. Katargina L.A., Khoroshilova-Maslova I.P., Maybogin A.M., Panova I.G., Osipova N.A. Pathomorphological features of the development of experimental retinopathy of prematurity. International Journal of Applied and Fundamental Research. 2017; 3 (2): 190–4 (in Russian).

8. Chakroborty D., Sarkar C., Mitra R.B., et al. Depleted dopamine in gastric cancer tissues: dopamine treatment retards growth of gastric cancer by inhibiting angiogenesis. Сlin. Cancer Res. 2004; 10 (13): 4349–56.

9. Chakroborty D., Chowdhury U.R., Sarkar C., et al. Dopamine regulates endothelial progenitor cell mobilization from mouse bone marrow in tumor vascularization. J. Clin. Invest. 2008; 118 (4): 1380–9. doi: 10.1172/JCI33125

10. Teunis M.A., Kavelaars A., Voest E., et al. Reduced tumor growth, experimental metastasis formation, and angiogenesis in rats with a hyperreactive dopaminergic system. FASEB J. 2002; 16 (11): 1465–7.

11. Sarkar C., Chakroborty D., Mitra R.B., et al. Dopamine in vivo inhibits VEGF-induced phosphorylation of VEGFR-2, MAPK, and focal adhesion kinase in endothelial cells. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2004; 287 (4): H1554-60.

12. Moreno-Smith M., Lutgendorf S.K., Sood A.K. Impact of stress on cancer metastasis. Future Oncol. 2010; 6 (12): 1863–81. doi: 10.2217/fon.10.142

13. Dvorak H.F. Angiogenesis: update 2005. J. Thromb. Haemost. 2005; 3 (8): 1835–42.

14. Daly C.J., McGrath J.C. Previously unsuspected widespread cellular and tissue distribution of β-adrenoceptors and its relevance to drug action. Trends Pharmacol. Sci. 2011; 32 (4): 219–26. doi: 10.1016/j.tips.2011.02.008

15. Cole S.W., Sood A.K. Molecular pathways: beta-adrenergic signaling in cancer. Clin. Cancer Res. 2012; 18 (5): 1201–6. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-11-0641

16. Vinci M.C., Bellik L., Filippi S., Ledda F., Parenti A. Trophic effects induced by alpha1D-adrenoceptors on endothelial cells are potentiated by hypoxia. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2007; 293 (4): H2140-7.

17. Guimaraes S., Moura D. Vascular adrenoceptors: an update. Pharmacol. Rev. 2001; 53: 319–56.

18. Dal Monte M., Martini D., Latina V., et al. Beta-adrenoreceptor (β-AR) agonism influences retinal responses to hypoxia in a mouse model of retinopathy of prematurity. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2012; 53: 2181–92.

19. Ricci B., Ricci F., Maggiano N. Oxygen-induced retinopathy in the newborn rat: morphological and immunohistological findings in animals treated with topical timolol maleate. Ophthalmologica. 2000; 214: 136–9.

20. Filippi L., Cavallaro G., Fiorini P., et al. Study protocol: safety and efficacy of propranolol in newborns with Retinopathy of Prematurity (PROP-ROP): ISRCTN18523491. BMC Pediatr. 2010; 10: 83.


Для цитирования:


Катаргина Л.А., Хорошилова-Маслова И.П., Бондаренко Н.С., Никишина Ю.О., Муртазина А.Р., Майбогин А.М., Осипова Н.А., Панова А.Ю., Судовская Т.В., Угрюмов М.В. Ангиогенные свойства катехоламинов в аспекте патогенеза ретинопатии недоношенных. Российский офтальмологический журнал. 2018;11(4):49-54. https://doi.org/10.21516/2072-0076-2018-11-4-49-54

For citation:


Katargina L.A., Khoroshilova-Maslova I.P., Bondarenko N.S., Nikishina J.O., Murtazina A.R., Maybogin A.M., Osipova N.A., Panova A.Y., Sudovskaya T.V., Ugryumov M.V. Angiogenic properties of catecholamines from the viewpoint of the pathogenesis of retinopathy of prematurity. Russian Ophthalmological Journal. 2018;11(4):49-54. (In Russ.) https://doi.org/10.21516/2072-0076-2018-11-4-49-54

Просмотров: 87


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2072-0076 (Print)
ISSN 2587-5760 (Online)