Влияние бандажирующей склеропластики на уровень дофамина и толщину хориоидеи у пациентов с прогрессирующей миопией различного генеза

Цель работы — изучение влияния бандажирующей склеропластики (БСП) на уровень дофамина (ДА) в слезной жидкости и толщину хориоидеи (ТХ) у пациентов с прогрессирующей миопией высокой степени.

Материал и методы. Обследованы 50 пациентов (50 глаз) в возрасте 13,1 ± 1,7 года, которых разделили на 3 группы: 1-я группа — дети с врожденной миопией (сфероэквивалент (СЭ) = 14,5 ± 3,4 дптр), 2-я группа — с приобретенной миопией (СЭ = 8,3 ± 1,5 дптр); 3-я группа (контрольная) — с эмметропией и гиперметропией слабой степени (СЭ = +0,25 ± 0,7 дптр). Помимо рутинного обследования, у детей определяли длину переднезадней оси глаза (ПЗО), ТХ на мультимодальной платформе SLO/OCT Mirante (Nidek, Япония) и светочувствительность сетчатки (СЧ) в макулярной области на микропериметре MP-3 (Nidek, Япония), а также проводили биохимические исследования слезной жидкости для определения концентрации ДА до и через 1 мес после БСП.

Результаты. Выявлено, что при врожденной миопии ДА после БСП снижается (в среднем на 77 пг/мг белка), а при приобретенной имеет тенденцию к повышению (в среднем на 20 пг/мг белка) на фоне увеличения ТХ (на 13,0–20,3 %) в обеих группах. У пациентов с прогрессирующей врожденной миопией при исходно низких значениях ДА после БСП не наблюдалось нормализации концентрации гормона, несмотря на улучшение кровенаполнения хориоидеи, а при исходно повышенном уровне ДА его концентрация в слезе после БСП снижалась на фоне увеличения ТХ.

Заключение. БСП способствует увеличению ТХ как при приобретенной, так и при врожденной миопии. При этом при врожденной миопии ДА после БСП снижается, а при приобретенной повышается, что может быть связано с сохранностью дофаминергических клеток сетчатки, способных синтезировать ДА.

1. Dolgin E. The myopia boom. Nature. 2015 Mar 19; 519 (7543): 276–8. PMID: 25788077. doi: 10.1038/519276a

2. Zhou X, Pardue MT, Iuvone PM, Qu J. Dopamine signaling and myopia development: What are the key challenges. Prog Retin Eye Res. 2017 Nov; 61: 60–71. doi: 10.1016/j.preteyeres.2017.06.003

3. Mathis U, Feldkaemper M, Liu H, Schaeffel F. Studies on the interactions of retinal dopamine with choroidal thickness in the chicken. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2023 Feb; 261 (2): 409–25. doi: 10.1007/s00417-022-05837-w

4. Feldkaemper M, Schaeffel F. An updated view on the role of dopamine in myopia. Exp Eye Res. 2013 Sep; 114: 106–19. doi: 10.1016/j.exer.2013.02.007

5. Iuvone PM, Tigges M, Fernandes A, Tigges J. Dopamine synthesis and metabolism in rhesus monkey retina: development, aging, and the effects of monocular visual deprivation. Vis Neurosci. 1989; 2 (5): 465–71. doi: 10.1017/s0952523800012360

6. McBrien NA, Gentle A. The role of visual information in the control of scleral matrix biology in myopia. Curr Eye Res. 2001 Nov; 23 (5): 313–9. doi: 10.1076/ceyr.23.5.313.5440

7. Papastergiou GI, Schmid GF, Laties AM, et al. Induction of axial eye elongation and myopic refractive shift in one-year-old chickens. Vision Res. 1998 Jun; 38 (12): 1883–8. doi: 10.1016/s0042-6989(97)00347-7

8. Stone RA, Lin T, Laties AM, Iuvone PM. Retinal dopamine and formdeprivation myopia. Proc Natl Acad Sci U S A. 1989 Jan; 86 (2): 704–6. doi: 10.1073/pnas.86.2.704

9. Guo SS, Sivak JG, Callender MG, Diehl-Jones B. Retinal dopamine and lens-induced refractive errors in chicks. Curr Eye Res. 1995 May; 14 (5): 385–9. doi: 10.3109/02713689508999936

10. Ohngemach S, Feldkaemper M, Schaeffel F. Pineal control of the dopamine D2-receptor gene and dopamine release in the retina of the chicken and their possible relation to growth rhythms of the eye. J Pineal Res. 2001 Sep; 31 (2): 145–54. doi: 10.1034/j.1600-079x.2001.310208.x

11. Ohngemach S, Hagel G, Schaeffel F. Concentrations of biogenic amines in fundal layers in chickens with normal visual experience, deprivation, and after reserpine application. Vis Neurosci. 1997; 14 (3): 493–505. doi:10.1017/s0952523800012153

12. Stone RA, Cohen Y, McGlinn AM, et al. Development of experimental myopia in chicks in a natural environment. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2016 Sep 1; 57 (11): 4779–89. doi: 10.1167/iovs.16-19310

13. Chakraborty R, Park HN, Hanif AM, et al. ON pathway mutations increase susceptibility to form-deprivation myopia. Exp Eye Res. 2015 Aug; 137: 79–83. doi: 10.1016/j.exer.2015.06.009

14. Park Hn, Jabbar SB, Tan CC, et al. Visually-driven ocular growth in mice requires functional rod photoreceptors. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2014 Sep 2; 55 (10): 6272–9. doi: 10.1167/iovs.14-14648

15. Wu XH, Li YY, Zhang PP, et al. Unaltered retinal dopamine levels in a C57BL/6 mouse model of form-deprivation myopia. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2015 Jan 20; 56 (2): 967–77. doi: 10.1167/iovs.13-13362

16. Jiang Z, Yan W, Fang H, et al. Refractive development and choroidal vascularity in the form-deprivation pigmented rabbit model. Transl Vis Sci Technol. 2025 Feb 3; 14 (2): 18. doi: 10.1167/tvst.14.2.18

17. Cao W, Drumheller A, Zaharia M, et al. Effects of experimentally induced ischemia on dopamine metabolism in rabbit retina. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1993 Oct; 34 (11): 3140–6. PMID: 8407222.

18. Sharma NiS; Acharya SK, Nair AP, et al. Dopamine levels in human tear fluid. Indian Journal of Ophthalmology. 2019 Jan; 67 (1): 38–41. doi: 10.4103/ijo.IJO_568_18

19. Тарутта Е.П., Маркосян Г.А., Сианосян А.А., Милаш С.В. Толщина хориоидеи при различных видах рефракции и ее динамика после склероукрепляющих операций. Российский офтальмологический журнал. 2017; 10 (4): 48–53. https://doi.org/10.21516/2072-0076-2017-10-4-48-53

20. Bromberg-Martin ES, Matsumoto M, Hikosaka O. Dopamine in motivational control: rewarding, aversive, and alerting. Neuron. 2010 Dec 9; 68 (5): 815–34. doi: 10.1016/j.neuron.2010.11.022

21. Мосолов С.Н. Современная антипсихотическая фармакотерапия шизофрении. РМЖ. 2004; 10: 646. [Mosolov S.N. Modern antipsychotic pharmacotherapy of schizophrenia. RMJ. 2004; 10: 646 (In Russ)].

22. Singh A, Kukreti R, Saso L, Kukreti S. Oxidative stress: A key modulator in neurodegenerative diseases. Molecules. 2019 Apr 22; 24 (8): 1583. doi: 10.3390/molecules24081583

23. Bosco DA, Fowler DM, Zhang Q, et al. Elevated levels of oxidized cholesterol metabolites in Lewy body disease brains accelerate alpha-synuclein fibrilization. Nat Chem Biol. 2006 May; 2 (5): 249–53. doi: 10.1038/nchembio782

24. Church FC. Treatment options for motor and non-motor symptoms of Parkinson’s disease. Biomolecules. 2021 Apr 20; 11 (4): 612. doi: 10.3390/biom11040612

25. Cramb KML, Beccano-Kelly D, Cragg SJ, Wade-Martins R. Impaired dopamine release in Parkinson’s disease. Brain. 2023 Aug 1; 146 (8): 3117–32. doi: 10.1093/brain/awad064

26. Howes O, McCutcheon R, Stone J. Glutamate and dopamine in schizophrenia: An update for the 21st century. Journal of Psychopharmacology. 2015; 29 (2): 97–115. doi: 10.1177/0269881114563634

27. Leucht S, Priller J, Davis JM. Antipsychotic drugs: A concise review of history, classification, indications, mechanism, efficacy, side effects, dosing, and clinical application. Am J Psychiatry. 2024 Oct 1; 181 (10): 865–78. doi: 10.1176/appi.ajp.20240738

28. Halliwell B. Oxidative stress and neurodegeneration: where are we now? J Neurochem. 2006 Jun; 97 (6): 1634–58. doi: 10.1111/j.1471-4159.2006.03907.x

29. Ингерлейб М.Б. Диагностический справочник. «Анализы. Полный справочник». Москва, 2011. [Ingerleyb M.B. Diagnostic Handbook. “Tests. Complete Handbook” Moscow, 2011 (In Russ.).

30. Djamgoz MB, Hankins MW, Hirano J, Archer SN. Neurobiology of retinal dopamine in relation to degenerative states of the tissue. Vision Res. 1997 Dec; 37 (24): 3509–29. doi: 10.1016/S0042-6989(97)00129-6

31. Нигматуллина Р.Р., Садыкова Д.И., Салахова К.Р., Сластникова Е.С., Хуснутдинова Л.Р. Роль дофамина в регуляции сердечно-сосудистой системы. Ульяновский медико-биологический журнал. 2004; 4: 25–38. doi: 10.34014/2227-1848-2024-4-25-38

32. Zhihao J, Wenjia Y Haili F, et al. Refractive development and choroidal vascularity in the form-deprivation pigmented rabbit model. Translational Vision Science & Technology. February 2025: 14 (18). doi: https://doi.org/10.1167/tvst.14.2.18

33. Нероев В.В., Тарутта Е.П., Хубиева Р.Р., Апаев А.В. Функциональные и структурные особенности сетчатки, характеристики фиксации и их корреляции с остротой зрения при нистагме и амблиопии различного генеза. Российский офтальмологический журнал. 2022; 15 (1): 32–8. https://doi.org/10.21516/2072-0076-2022-15-1-32-38

34. Хубиева Р.Р., Тарутта Е.П., Апаев А.В., Маркосян Г.А. Корреляционный анализ некоторых функциональных и анатомических параметров зрительного анализатора при нистагме и амблиопии различного генеза. Российская педиатрическая офтальмология. 2021; 16 (1): 13–22. (In Russ.). doi: 10.17816/rpo2021-16-1-13-22

35. Тарутта Е.П., Хубиева Р.Р., Маркосян Г.А. Сравнение некоторых хориоретинальных параметров глаз с врожденной и приобретенной миопией и изучение их взаимосвязи с анатомо-оптическими показателями. Российский офтальмологический журнал. 2021; 14 (3): 46–53. https://doi.org/10.21516/2072-0076-2021-14-3-46-53

36. Тарутта Е.П., Иомдина Е.Н., Кружкова Г.В., Маркосян Г.А. Отдаленные результаты склерореконструктивного лечения прогрессирующей миопии. Российский офтальмологический журнал. 2011; 4 (1): 71–5.

37. Маркосян Г.А., Тарутта Е.П., Иомдина Е.Н. и др. Клинико-функциональные и биомеханические аспекты патогенеза, диагностики и лечения врожденной миопии: обзор литературы и анализ собственных данных. Российская педиатрическая офтальмология. 2016; 11 (3): 149–57 doi: 10.18821/1993-1859-2016-11-3-149-157

38. Тарутта Е.П., Иомдина Е.Н., Маркосян Г.А. и др. Транспальпебральная реоофтальмография как метод оценки эффективности склероукрепляющего и трофического лечения прогрессирующей миопии. Офтальмология. 2018; 15 (4): 439–46. https://doi.org/10.18008/1816-5095-2018-4-439-446

39. Тарутта Е.П., Маркосян Г.А., Сианосян А.А., Милаш С.В. Толщина хориоидеи у детей с миопией и ее изменения после хирургического укрепления склеры. Вестник офтальмологии. 2020; 136 (3): 10–7. https://doi.org/10.17116/oftalma202013603110

40. Тарутта Е.П., Максимова М.В., Шенгелая В.Г. Состояние гемодинамики у больных с близорукостью после различных склероукрепляющих вмешательств. В кн.: Патология глазного дна и зрительного нерва. Москва; 1991: 101–6.

41. Nickla DL, Wallman J. The multifunctional choroid. Prog Retin Eye Res. 2010; 29: 144–68. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2009.12.002

42. Read SA, Fuss JA, Vincent SJ, Collins MJ, Alonso-Caneiro D. Choroidal changes in human myopia: insights from optical coherence tomography imaging. Clin Exp Optom. 2019 May; 102 (3): 270–85. doi: 10.1111/cxo

43. Маркосян Г.А., Тарутта Е.П., Иомдина Е.Н. и др. Влияние различных средств оптической коррекции на динамику рефракции после малоинвазивного склероукрепляющего лечения прогрессирующей миопии у детей. Российский офтальмологический журнал. 2025; 18 (2): 69–74. https://doi.org/10.21516/2072-0076-2025-18-2-69-74