Preview

Российский офтальмологический журнал

Расширенный поиск

Реакция мультиполярных нейронов сетчатки на фотоповреждение в эксперименте

https://doi.org/10.21516/2072-0076-2024-17-2-62-67

Аннотация

Цель работы — оценить реакцию мультиполярных нейронов сетчатки на световое облучение в зависимости от интенсивности и продолжительности воздействия. Материал и методы. Беспородных половозрелых белых крыс (n = 50, 100 глаз) весом 180–200 г подвергали постоянному круглосуточному освещению (200, 3500 лк; 1, 2, 7, 14, 30 сут). В качестве контроля использовали 25 необлученных животных (50 глаз). На полутонких срезах, окрашенных толуидиновым синим, вычисляли число нейронов ганглионарного слоя с явлениями кариопикноза, очагового и тотального хроматолиза. В зрительном нерве подсчитывали процент дегенеративно измененных аксонов и число нервных волокон с деформацией миелиновой оболочки. Ультраструктурные изменения нейронов изучали с помощью электронного микроскопа JEM-100 CX-II. Результаты. В ранние сроки эксперимента (1-е, 2-е сутки) в перикарионах мультиполярных нейронов сетчатки наблюдаются реактивные и деструктивные изменения органелл. Гранулярная эндоплазматическая сеть фрагментируется, утрачивает часть своих рибосом, а из ее цистерн образуются различных размеров вакуоли. При увеличении срока воздействия (7-е, 30-е сут) наблюдается усиление процессов деструкции, более выраженное после высокоинтенсивного (3500 лк) светового облучения. Фотоповреждение вызывает изменение всех компонентов зрительного нерва и характеризуется деструкцией органелл, снижением количества элементов цитоскелета в аксоне и расщеплением миелиновой оболочки. Заключение. Изменения мультиполярных нейронов сетчатки после фотоповреждения преимущественно касаются содержания и распределения хроматофильной субстанции и зависят от интенсивности и длительности освещения.

Об авторах

А. В. Потапов
ФГБОУ ВО «Сибирский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия

Алексей Валерьевич Потапов — д-р мед. наук, профессор кафедры гистологии, эмбриологии и цитологии  

ул. Московский тракт, д. 2, Томск, 63405



Е. Ю. Варакута
ФГБОУ ВО «Сибирский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия

Елена Юрьевна Варакута — д-р мед. наук, доцент, заведующая кафедрой нормальной анатомии человека с курсом топографической анатомии и оперативной хирургии  

ул. Московский тракт, д. 2, Томск, 63405



А. В. Солонский
ФГБОУ ВО «Сибирский государственный медицинский университет» Минздрава России; ФГБНУ «НИИ психического здоровья, Томский национальный исследовательский медицинский центр РАН»
Россия

Анатолий Владимирович Солонский — д-р мед. наук, профессор кафедры гистологии, эмбриологии и цитологии; ведущий научный сотрудник лаборатории клинической психонейроиммунологии и нейробиологии  

ул. Московский тракт, д. 2, Томск, 63405;
ул. Алеутская, д. 4, Томск, 634014



А. В. Герасимов
ФГБОУ ВО «Сибирский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия

Александр Владимирович Герасимов — д-р мед. наук, профессор кафедры гистологии, эмбриологии и цитологии 

ул. Московский тракт, д. 2, Томск, 63405



А. А. Жданкина
ФГБОУ ВО «Сибирский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия

Анна Александровна Жданкина — д-р мед. наук, профессор кафедры гистологии, эмбриологии и цитологии  

ул. Московский тракт, д. 2, Томск, 63405



С. В. Логвинов
ФГБОУ ВО «Сибирский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия

Сергей Валентинович Логвинов — д-р мед. наук, профессор, заведующий кафедрой гистологии, эмбриологии и цитологии  

ул. Московский тракт, д. 2, Томск, 63405



Список литературы

1. Azizi M, Golmohammadi R, Aliabadi M. Comparative analysis of lighting characteristics and ultraviolet emissions from commercial compact fluorescent and incandescent lamps. J Res Health Sci. 2016; 16 (4): 200–5. PMCID: PMC7189929

2. Fenton L, Moseley H. UV emissions from low energy artificial light sources. Photodermatol Photoimmunol Photomed. 2014; 30 (2–3): 153–9. doi: 10.1111/phpp.12094

3. Korgavkar K, Xiong M, Weinstock MA. Compact fluorescent lamps and risk of skin cancer. J Cutan Med Surg. 2013; 17 (5): 308–12. doi: 10.2310/7750.2013.12115

4. Behar-Cohen F, Martinsons C, Vi not F, et al. Light-emitting diodes (LED) for domestic lighting: any risks for the eye? Prog Retin Eye Res. 2011; 30 (4): 239–57. doi: 10.1016/j.preteyeres.2011.04.002

5. Moseley H. Ferguson J. The risk to normal and photosensitive individuals from exposure to light from compact fluorescent lamps. Photodermatol Photoimmunol Photomed. 2011; 27 (3): 131–7. doi: 10.1111/j.1600-0781.2011.00576.x

6. Necz PP, Bakos J. Photobiological safety of the recently introduced energy efficient household lamps. J Occup Med Environ Health. 2014; 27 (6): 1036–42. doi: 10.2478/s13382-014-0332-2

7. Xie C, Zhu H, Chen S, et al. Chronic retinal injury induced by white LED light with different correlated color temperatures as determined by microarray analyses of genome-wide expression patterns in mice. J Photochem Photobiol B. 2020; 210: 111977. doi: 10.1016/j.jphotobiol.2020.111977

8. Gabel V, Maire M, Reichert CF, et al. Effects of artificial dawn and morning blue light on daytime cognitive performance, well-being, cortisol and melatonin levels. Chronobiol Int. 2013; 30 (8): 988–97. doi: 10.3109/07420528.2013.793196

9. He ling M, K lbl PS, Singh P. Hazards posed by LEDs? A comparative study. Ophthalmologe. 2019; 116 (7): 625–30. doi: 10.1007/s00347-018-0778-x

10. O'Hagan JB, Khazova M, Price LL. Low-energy light bulbs, computers, tablets and the blue light hazard. Eye (Lond). 2016; 30 (2): 230–3. doi: 10.1038/eye.2015.261

11. Bauer M, Glenn T, Monteith S, et al. The potential influence of LED lighting on mental illness. World J Biol Psychiatry. 2018; 19 (1): 59–73. doi: 10.1080/15622975.2017.1417639

12. Torriglia A, Mascarelli F, Behar-Cohen F. New lighting technology and our eyes. Med Sci (Paris). 2020; 36 (8–9): 769–73. doi: 10.1051/medsci/2020133

13. Touitou Y, Point S. Effects and mechanisms of action of light-emitting diodes on the human retina and internal clock. Environ Res. 2020; 190: 109942. doi: 10.1016/j.envres.2020.109942

14. Shang YM, Wang GS, Sliney D, Yang CH, Lee LL. White light-emitting diodes (LEDs) at domestic lighting levels and retinal injury in a rat model. Environ Health Perspect. 2014; 122 (3): 269–76. doi: 10.1289/ehp.1307294

15. Cho Y, Ryu SH, Lee BR, et al. Effects of artificial light at night on human health: A literature review of observational and experimental studies applied to exposure assessment. Chronobiol Int. 2015; 32 (9): 1294–310. doi: 10.3109/07420528.2015.1073158

16. Bonmati-Carrion MA, Arguelles-Prieto R, Martinez-Madrid MJ, et al. Protecting the melatonin rhythm through circadian healthy light exposure. Int J Mol Sci. 2014; 15 (12): 23448–500. doi: 10.3390/ijms151223448

17. Smolensky MH, Sackett-Lundeen LL, Portaluppi F. Nocturnal light pollution and underexposure to daytime sunlight: Complementary mechanisms of circadian disruption and related diseases. Chronobiol Int. 2015; 32 (8): 1029–48. doi: 10.3109/07420528.2015.1072002

18. Touitou Y, Reinberg A, Touitou D. Association between light at night, melatonin secretion, sleep deprivation, and the internal clock: Health impacts and mechanisms of circadian disruption. Life Sci. 2017; 173: 94–106. doi: 10.1016/j.lfs.2017.02.008

19. Jaadane I, Villalpando Rodriguez GE, Boulenguez P, et al. Effects of white light-emitting diode (LED) exposure on retinal pigment epithelium in vivo. J Cell Mol Med. 2017; 21 (12): 3453–66. doi: 10.1111/jcmm.13255

20. Krigel A, Berdugo M, Picard E, et al. Light-induced retinal damage using different light sources, protocols and rat strains reveals LED phototoxicity. Neuroscience. 2016; 339: 296–307. doi: 10.1016/j.neuroscience.2016.10.015

21. Jaadane I, Boulenguez P, Chahory S, et al. Retinal damage induced by commercial light emitting diodes (LEDs). Free Radic Biol Med. 2015; 84: 373–84. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2015.03.034

22. Koizumi A. Morphological and functional diversity of retinal ganglion cells in the common marmoset. Brain Nerve. 2015; 67 (2): 193–8. doi: 10.11477/mf.1416200111

23. Wang HZ, Lu QJ, Wang NL, et al. Loss of melanopsin-containing retinal ganglion cells in a rat glaucoma model. Chin Med J (Engl). 2008; 121 (11): 1015–9. PMID: 18706250

24. Roecklein KA, Wong PM, Miller MA, et al. Melanopsin, photosensitive ganglion cells, and seasonal affective disorder. Neurosci Biobehav Rev. 2013; 37 (3): 229–39. doi: 10.1016/j.neubiorev.2012.12.009

25. Ramsey DJ, Ramsey KM, Vavvas DG. Genetic advances in ophthalmology: the role of melanopsin-expressing, intrinsically photosensitive retinal ganglion cells in the circadian organization of the visual system. Semin Ophthalmol. 2013 Sep-Nov; 28 (5–6): 406–21. doi: 10.3109/08820538.2013.825294

26. Asakawa K, Ishikawa H. Why do melanopsin-containing retinal ganglion cells have the greatest sensitivity to blue light? Acta Ophthalmol. 2015; 93 (4): e308–9. doi: 10.1111/aos.12574

27. Feigl B, Zele AJ. Melanopsin-expressing intrinsically photosensitive retinal ganglion cells in retinal disease. Optom Vis Sci. 2014 Aug; 91 (8): 894–903. doi: 10.1097/OPX.0000000000000284

28. Hattar S, Liao HW, Takao M, Berson DM, Yau KW. Melanopsin-containing retinal ganglion cells: architecture, projections, and intrinsic photosensitivity. Science. 2002; 295 (5557): 1065–70. doi: 10.1126/science.1069609

29. Lax P, Ortu o-Lizar n I, Maneu V, Vidal-Sanz M, Cuenca N. Photosensitive melanopsin-containing retinal ganglion cells in health and disease: Implications for circadian rhythms. Int J Mol Sci. 2019; 20 (13): 3164. doi: 10.3390/ijms20133164

30. Morshedian A, Huynh TH, Frederiksen R, Fain GL, Sampath AP. Pupillary light reflex of lamprey Petromyzon marinus. Curr Biol. 2021; 31 (2): R65–R66. doi: 10.1016/j.cub.2020.11.021

31. Sanes JR, Masland RH. The types of retinal ganglion cells: current status and implications for neuronal classification. Annu Rev Neurosci. 2015; 38: 221–46. doi: 10.1146/annurev-neuro-071714-034120


Рецензия

Для цитирования:


Потапов А.В., Варакута Е.Ю., Солонский А.В., Герасимов А.В., Жданкина А.А., Логвинов С.В. Реакция мультиполярных нейронов сетчатки на фотоповреждение в эксперименте. Российский офтальмологический журнал. 2024;17(2):62-67. https://doi.org/10.21516/2072-0076-2024-17-2-62-67

For citation:


Potapov A.V., Varakuta E.Y., Solonsky A.V., Gerasimov A.V., Zhdankina A.A., Logvinov S.V. Response of multipolar retinal neurons to photodamage in the experiment. Russian Ophthalmological Journal. 2024;17(2):62-67. (In Russ.) https://doi.org/10.21516/2072-0076-2024-17-2-62-67

Просмотров: 412


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2072-0076 (Print)
ISSN 2587-5760 (Online)