Применение нового способа лечения персистирующих дефектов роговицы различного генеза

Цель работы — сравнить эффективность применения обычного консервированного амниона и амниона, насыщенного лизатом богатой тромбоцитами плазмы (БоТП), для лечения эрозий после ожогов роговицы II–III степени и язв после кератитов. Материал и методы. Для сравнения эффективности консервированного амниона и пропитанного лизатом БоТП выделены 2 группы пациентов: основная (амнион, насыщенный лизатом БоТП) и группа сравнения (амнион без лизата БоТП). Использовали покрытие роговицы амниотической мембраной на 7–14 дней, после чего амнион удаляли и проводили контроль состояния роговицы. В каждую группу вошли пациенты с эрозиями после свежих ожогов площадью в среднем 60 % роговицы и язвами после кератитов с толщиной роговицы на дне язвы в среднем 382 мкм в опытной группе и 393 мкм в группе сравнения. Лизат БоТП изготавливали из аутологичной крови пациентов в лаборатории трансплантации клеток и иммунотипирования НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского по запатентованной технологии. Для этого из крови доноров выделяли БоТП с содержанием тромбоцитов свыше 1000 тыс/мкл, которую затем замораживали при -80 °С и размораживали при 0–4 °С с целью разрушения клеточных мембран для получения лизата. Результаты. Использование амниотической мембраны, насыщенной лизатом БоТП, приводило к эпителизации эрозий после свежих ожогов за 1,3 мес и уменьшению отека роговицы в среднем на 247 мкм, эпителизации язв после кератитов за 1,3 мес и увеличению толщины роговицы на дне язвы на 62,5 мкм. Лечение с помощью обычного консервированного амниона занимало 1,8 мес до полной эпителизации при свежих ожогах с уменьшением отека стромы роговицы на 193 мкм, а эпителизация язв после кератитов требовала 1,6 мес и заканчивалась увеличением толщины роговицы в месте язвы на 42 мкм. Заключение. Представленный метод лечения эрозий и язв роговицы различного генеза с использованием амниотической мембраны, насыщенной лизатом аутологичной БоТП, позволяет достичь полной и стойкой эпителизации в более короткие сроки и с меньшим количеством покрытий амнионом, чем в группе сравнения. При этом пациентам не требуется дополнительное консервативное лечение эпителиопатий.

1. Vision Loss Expert Group of the Global Burden of Disease Study. Causes of blindness and vision impairment in 2020 and trends over 30 years: evaluating the prevalence of avoidable blindness in relation to “VISION 2020: the Right to Sight”. Lancet Global Health 2020. doi.org/10.1016/S2214-109X(20)30489-7

2. Куликов А.Н., Чурашов С.В., Черныш В.Ф. и др. Современные подходы к проблеме выбора носителя для культивирования стволовых клеток роговицы в лечении лимбальной недостаточности. Офтальмологические ведомости. 2018; 11 (2): 48–56. doi: 10.17816/OV11248-56

3. Cabral JV, Jackson CJ, Utheim TP, Jirsova K. Ex vivo cultivated oral mucosal epithelial cell transplantation for limbal stem cell deficiency: a review. Stem Cell Res Ther. 2020;11(1):301. doi: 10.1186/s13287-020-01783-8

4. Шевлюк Н.Н., Гатиатуллин И.З., Стадников А.А. Особенности репаративных гистогенезов при использовании биопластических материалов. Журнал анатомии и гистопатологии. 2020; 9 (1): 86–93. doi: 10.18499/2225-7357-2020-9-1-86-93

5. Nejad AR, Hamidieh AA, Amirkhani MA, Sisakht MM. Update review on five top clinical applications of human amniotic membrane in regenerative medicine. Placenta. 2021; 103: 104–19. doi: 10.1016/j.placenta.2020.10.026

6. Cirman T, Beltram M, Schollmayer P, Rožman P, Kreft ME. Amniotic membrane properties and current practice of amniotic membrane use in ophthalmology in Slovenia. Cell and Tissue Banking. 2013; 15 (2): 177–92. doi: 10.1007/s10561-013-9417-6

7. McDaniel JS, Wehmeyer JL, Cornell LE, Johnson AJ, Zamora DO. Amniotic membrane allografts maintain key biological properties post SCCO2 and lyophilization processing. J Biomater Appl. 2021; 35 (6): 592–601. doi: 10.1177/0885328220952585

8. Le Q, Deng SX. The application of human amniotic membrane in the surgical management of limbal stem cell deficiency. Ocul Surf. 2019; 17 (2): 221–9. doi: 10.1016/j.jtos.2019.01.003

9. Борзенок С.А., Ролик О.И., Онищенко Н.А., Комах Ю.А. О возможности совершенствования консервации донорских роговиц путем применения регуляторных пептидов. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2011; 13 (4): 101–5. doi:10.15825/1995-1191-2011-4-101-105

10. Walkden A. Amniotic membrane transplantation in ophthalmology: An updated perspective. Clin Ophthalmol. 2020 Jul 22; 14: 2057–72. doi: 10.2147/OPTH.S208008

11. Amable PR, Carias RB, Teixeira MV, et al. Platelet-rich plasma preparation for regenerative medicine: optimization and quantification of cytokines and growth factors. Stem Cell Res Ther. 2013; (4): 67. doi: 10.1186/scrt218

12. Gupta S, Paliczak A, Delgado D. Evidence-based indications of platelet-rich plasma therapy. Expert Rev Hematol. 2021; 14 (1): 97–108. doi: 10.1080/17474086.2021.1860002

13. Макаров М.С., Сторожева М.В., Конюшко О.И., Боровкова Н.В., Хватов В.Б. Влияние концентрации тромбоцитарного фактора роста на пролиферативную активность фибробластов человека. Клеточные технологии в биологии и медицине. 2013; (2): 111–5. doi: 10.1007/s10517-013-2199-9

14. Боровкова Н.В., Макаров М.С., Андреев Ю.В., Сторожева М.В., Пономарев И.Н. Оценка цитокинового состава сыворотки крови и препаратов на основе тромбоцитов человека. Молекулярная медицина. 2021; 19 (3): 51–7. doi: 10.29296/24999490-2021-03-08

15. Боровкова Н.В., Макаров М.С., Сторожева М.В., Пономарев И.Н. Способ приготовления лизата тромбоцитов с высоким содержанием факторов роста. Патент РФ на изобретение № 2739515C1 от 25.12.2020.

16. Ченцова Е.В., Боровкова Н.В., Боженко Д.А. и др. Способ хирургического лечения дефектов роговицы различного генеза. Патент РФ на изобретение № 2782129, 2022.