К вопросу о роли вирусов герпеса человека в патогенезе опухолей орбиты и глаза: детекция вирусной ДНК в биоптатах опухолей

Проведено сравнительное изучение частоты выявления ДНК вируса простого герпеса (ВПГ) 1 и 2, вируса Эпштейна - Барр (ВЭБ), цитомегаловируса (ЦМВ), вируса герпеса человека 6-го типа (ВГЧ-6) и 8-го типа (ВГЧ-8), токсоплазмы гондии, хламидии трахоматис, микоплазмы и уреаплазмы в плазме крови и биоптатах опухолей: увеальной меланомы (n = 10), ретинобластомы (n = 11), лимфомы орбиты (n = 7), аденомы слезной железы (n = 2), рабдомиосаркомы (n = 2) в полимеразной цепной реакции (ПЦР) реального времени. В целом в 14 (43,75 %) из 32 биоптатов опухолей обнаружены ДНК герпес-вирусов, уреаплазмы и хламидии трахоматис. При лимфомах орбиты положительные результаты ПЦР выявлены почти в 2 раза чаще, чем при ретинобластоме (РБЛ) (6/7 - 85,7 % и 5/11 - 45,5 % соответственно; р = 0,15), и в 4 раза чаще, чем при увеальной меланоме (6/7 - 85,7 % и 2/10 - 20 % соответственно; р = 0,015). Спектр возбудителей различался при разных опухолях. При лимфомах орбиты обнаружены только геномы лимфотропных герпес-вирусов (ВЭБ, ВГЧ-6 и ВГЧ-8) с преобладанием ВЭБ. В ткани ретинобластомы помимо ВГЧ-6 и ВЭБ идентифицированы ДНК ЦМВ и уреаплазмы уреалитикум. Реже всего (2 из 10 пациентов) инфекционные ДНК выявлялись в биоптатах увеальной меланомы: в обоих случаях обнаружен геном хламидии трахоматис, в одном из них - в сочетании с ДНК ВЭБ и ЦМВ. В плазме крови ДНК инфекционных возбудителей выявлены только у одного из 28 обследованных, существенно реже, чем в биоптатах (р = 0,002). Необходимы дальнейшие исследования для оценки роли персистирующих возбудителей, в первую очередь герпес-вирусов, хламидий и уреаплазмы, в патогенезе внутриглазных опухолей и лимфомы орбиты // Российский офтальмологический журнал, 2016; 2: 42-46.

ПЦР, ВЭБ, ЦМВ, ВГЧ-6, ВГЧ-8, хламидии трахоматис, уреаплазма, увеальная меланома, ретинобластома, лимфомы орбиты, PCR, EBV, CMV, HHV 6, HHV 8, Chlamydia trachomatis, ureaplasma, uveal melanoma, retinoblastoma, orbital lymphoma

1. Moore P. S., Chang Y. Why do viruses cause cancer? Highlights of the first century of human tumour virology. Nat. Rev. Cancer. 2010;10(12):878-89.

2. Белова Е.Г., Кускова Т.К. Герпесвирусы 6, 7, 8-го типов. Лечащий врач. 2006; 2:15-8. Belova E.G., Kuskova T.K. Human herpesviruses-6,-7,-8. Lechashchiy vrach. 2006; 2:15-8 (In Russian).

3. Chen X.Z., Chen H., Castro F.A., Hu J.K., Brenner H. Epstein-Barr virus infection and gastric cancer: a systematic review. Medicine (Baltimore). 2015; 94(20):e792.

4. Gilley M.L. Genomic assays for Epstein-Barr virus-positive gastric adenocarcinoma. Exp. Mol. Med. 2015;47(1):134-49.

5. Светицкий П.В., Златник Е.Ю., Зыкова Т.А. и др. Течение рака органов полости рта с учетом ассоциированности с вирусом Эпштейна-Барр, папилломы человека и уровня некоторых цитокинов. Медицинские науки. 2014. 11:120-2.

6. Zhou Y., Attygalle A.D., Chuang S.S., et al. Angioimmunoblastic T-cell lymphoma: histological progression associates with EBV and HHV6B viral load. Br J Haematol. 2007;138(1):44-53.

7. Chi J., Gu B., Zhang C., et al. Human herpesvirus 6 latent infection in patients with glioma. J Infect Dis. 2012; 206(9):1394-8.

8. Rohner E., Wyss N., Trelle S., et al. HHV-8 seroprevalence: a global view. Syst. Rev. 2014. 12; 3:11.

9. Soroceanu L., Cobbs C.S. Is HCMV a tumor promoter? Virus Res. 2011; 157(2):193-203.

10. Bishop R.K., Oseguera C., Spencer J.V. Human cytomegalovirus interleukin-10 promotes proliferation and migration of MCF-7 breast cancer cells. Cancer Cell Microenviron. 2015. 2(1): 678-80.

11. Harkins L.E., Matlaf L.A., Soroceanu L., et al. Detection of human cytomegalovirus in normal and neoplastic breast epithelium. Herpes viridae. 2010; 1(1):1-8.

12. Van Deusen H.R., Kalejta R.F. The retinoblastoma tumor suppressor promotes efficient human cytomegalovirus lytic replication. J Virol. 2015; 89(9):5012-21.

13. Смирнова К.В., Дидук С.В., Сенюта Н.Б., Гурцевич В.Э. Молекулярно-биологические свойства гена LMPI вируса Эпштейна-Барр: структура, функции и полиморфизм. Вопросы вирусологии. 2015; 60(3):5-13.

14. Lenze U., Pohlig F., Muhlhofer H., et al. Do human tumor-associated viruses play a role in the development of synovial sarcoma? Clin. Sarcoma Res. 2015; 15(5):11-3.

15. Rezk S.A., Weiss L.M. Epstein-Barr virus-associated lymphoproliferative disorders. Hum.Pathol. 2007; 38(9):1293-304.

16. Гурцевич В.Э. Роль вируса Эпштейна_Барр в онкогематологических заболеваниях человека. Клиническая онкогематология. 2010: 3(3):222-34. Gurtsevich V.E. The role of the virus Epstein-Barr in hematologic human diseases. Klinicheskaya onkogematologiya. 2010: 3(3):222-34.

17. Daibata M., Komatsu T., Taguchi H. Human herpesviruses in primary ocular lymphoma. Leuk Lymphoma. 2000; 37(3-4):361-5.

18. Кричевская Г.И., Слепова О.С., Саакян С.В., Мякошина Е.Б., Денисова Е.В. К вопросу о роли инфекций в патогенезе ретинобластомы. Российский офтальмологический журнал. 2013; 2:37-40.

19. Yow M.A., Tabrizi S.N., Severi G., et al. Detection of infectious organisms in archival prostate cancer tissues. BMC Cancer. 2014;14:579.

20. Markowska J. The role of chlamydia trachomatis infection in CIN and cervical cancer development. Ginekol Pol. 2002;73(5):472-6.

21. Alibek K., Karatayeva N., Bekniyazov I. The role of infectious agents in urogenital cancers. Infect Agent Cancer. 2012;7(1):35-42.

22. Gogineni E., Marshall V., Miley W., et al. Quantitative Determinations of Anti-Kaposi’s Sarcoma-Associated Herpesvirus (KSHV) Antibody Levels in Men Who Have Sex with Men. Diagn Microbiol Infect Dis. 2013; 76(1): 56-60.

23. Бойцов А.Г., Есипов А.С. Клиническая интерпретация результатов лабораторного обследования пациентов с урогенитальным хламидиозом. Terra Medica Nova. 2000; 4:6-10.