Структура сосудистого русла и интерстиция сетчатки глаза человека при терминальной стадии первичной открытоугольной глаукомы
https://doi.org/10.21516/2072-0076-2022-15-2-supplement-121-128
Аннотация
Цель работы — изучение структурной организации сосудистого русла сетчатки глаза человека при терминальной стадии первичной открытоугольной глаукомы (ПОУГ).
Материал и методы. Проведен сравнительный иммуногистохимический анализ содержания сосудов в фрагментах сетчатки глаз пациентов с терминальной стадией ПОУГ, энуклеированных по медицинским показаниям, и увеальной меланомы с использованием маркера эндотелия кровеносных сосудов CD34. Методами электронной микроскопии и морфометрии исследована ультраструктурная организация интерстиция и эндотелиоцитов кровеносных микрососудов сетчатки.
Результаты. Выявлено статистически значимое увеличение объемной плотности интерстиция и снижение объемной плотности CD34+-кровеносных сосудов в сетчатке глаза человека при терминальной стадии ПОУГ по сравнению с увеальной меланомой. Отмечено повышение объемной плотности люминальных и базальных кавеол и образование трансэндотелиальных каналов в цитоплазме эндотелиоцитов кровеносных капилляров сетчатки при терминальной стадии ПОУГ.
Заключение. При терминальной стадии ПОУГ в сетчатке человека увеличиваются размеры интерстициальных пространств и снижается объемная плотность кровеносных сосудов. Увеличение объемной плотности люминальных и базальных кавеол и образование трансэндотелиальных каналов в цитоплазме эндотелиоцитов кровеносных капилляров свидетельствуют о росте трансцитоза и повышении проницаемости гематоретинального барьера.
Об авторах
Н. П. БгатоваРоссия
Наталия Петровна Бгатова — д-р биол. наук, профессор, заведующая лабораторией ультраструктурных исследований
ул. Тимакова, д. 2, Новосибирск, 630060
Н. А. Обанина
Россия
Наталья Андреевна Обанина — младший научный сотрудник лаборатории ультраструктурных исследований, ORCID ID
ул. Тимакова, д. 2, Новосибирск, 630060
А. В. Еремина
Россия
Алена Викторовна Еремина — канд. мед. наук, научный сотрудник научного отдела
ул. Колхидская, д. 10, Новосибирск, 630096
А. Н. Трунов
Россия
Александр Николаевич Трунов — д-р мед. наук, профессор, заместитель директора по научной работе
ул. Колхидская, д. 10, Новосибирск, 630096
В. В. Черных
Россия
Валерий Вячеславович Черных — д-р мед. наук, профессор, директор
ул. Колхидская, д. 10, Новосибирск, 630096
Список литературы
1. Kri aj D. What is glaucoma? In: Kolb H., Fernandez E., Nelson R., Jones B.W. eds. Webvision: The organization of the retina and visual system. Available at: https://webvision.med.utah.edu/book/part-xii-cell-biology-of-retinaldegenerations/what-is-glaucoma/ (Accessed May 30, 2019).
2. Jassim A.H., Inman D.M. Evidence of hypoxic glial cells in a model of ocular hypertension. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2019; 60 (1): 1–15. doi: 10.1167/ iovs.18-24977
3. Flammer J., Org l S., Costa V.P., et al. The impact of ocular blood flow in glaucoma. Prog. Retin. Eye Res. 2002; 21 (4): 359–93. doi:10.1016/s1350-9462(02)00008-3
4. Tezel G., Wax M.B. Increased production of tumor necrosis factor-alpha by glial cells exposed to simulated ischemia or elevated hydrostatic pressure induces apoptosis in cocultured retinal ganglion cells. J. Neurosci. 2000; 20 (23): 8693–700. doi:10.1523/JNEUROSCI.20-23-08693.2000
5. Wax M.B., Tezel G. Immunoregulation of retinal ganglion cell fate in glaucoma. Exp. Eye. Res. 2009; 88 (4): 825–30. doi:10.1016/j.exer.2009.02.005
6. Howell G.R., Soto I., Zhu X., et al. Radiation treatment inhibits monocyte entry into the optic nerve head and prevents neuronal damage in a mouse model of glaucoma. J. Clin. Invest. 2012; 122 (4): 1246–61. doi:10.1172/JCI61135
7. Huang J., Zhao Q., Li M., et al. The effects of endothelium-specific CYP2J2 overexpression on the attenuation of retinal ganglion cell apoptosis in a glaucoma rat model. FASEB J. 2019; 33 (10): 11194–209. doi: 10.1096/fj.201900756R
8. Alyahya K., Chen C.T., Mangan B.G., et al. Microvessel loss, vascular damage and glutamate redistribution in the retinas of dogs with primary glaucoma. Vet. Ophthalmol. 2007; Suppl 1: 70–7. doi: 10.1111/j.1463-5224.2007.00562.x
9. Trost A., Motloch K., Bruckner D., et al. Time-dependent retinal ganglion cell loss, microglial activation and blood-retina-barrier tightness in an acute model of ocular hypertension. Exp. Eye Res. 2015; 136: 59–71. doi:10.1016/j.exer.2015.05.010
10. Курышева Н.И., Маслова Е.В., Трубилина А.В., Арджевнишвили Т.Д., Фомин А.В. Особенности макулярного кровотока при глаукоме. Вестник офтальмологии. 2017; 133 (2): 29–38.
11. Brusini P. OCT Glaucoma Staging System: a new method for retinal nerve fiber layer damage classification using spectral-domain OCT. Eye (Lond). 2018; 32 (1): 113–9. doi:10.1038/eye.2017.159
12. Усман А.Б., Марченко Л.Н., Качан Т.В., Далидович А.А. АнгиоОКТ в ранней диагностике первичной открытоугольной глаукомы. Офтальмология. Восточная Европа. 2018; 8 (1): 19–26.
13. Almasieh M., Wilson A.M., Morquette B., et al. The molecular basis of retinal ganglion cell death in glaucoma. Prog. Retin. Eye Res. 2012; 31 (2): 152–81. doi:10.1016/j.preteyeres.2011.11.002
14. Liu W.W., Margeta M.A. Imaging retinal ganglion cell death and dysfunction in glaucoma. Int. Ophthalmol. Clin. 2019; 59 (4): 41–54. doi:10.1097/ IIO.0000000000000285
15. Нестеров А.П. Патогенез первичной открытоугольной глаукомы: какая концепция более правомерна? Офтальмологические ведомости. 2008; 1 (4): 63–7.
16. Saba A., Usmani A., Islam Q.U., Assad T. Unfolding the enigma of lamina cribrosa morphometry and its association with glaucoma. Pak. J. Med. Sci. 2019; 35 (6): 1730–5. doi:10.12669/pjms.35.6.568
17. Kang J.M., Tanna A.P. Glaucoma. Med. Clin. North Am. 2021; 105 (3): 493–510. doi:10.1016/j.mcna.2021.01.004
18. Семенова Н.С., Гурова Е.В., Соколова Е.Н., Акопян В.С. Оптическая когерентная томография — ангиография для оценки сосудистой плотности сетчатки при глаукоме. Современные технологии в офтальмологии. 2017; 4: 177–9.
19. Rao H.L., Pradhan Z.S., Suh M.H., et al. Optical Coherence Tomography Angiography in glaucoma. J. Glaucoma. 2020; 29 (4): 312–21. doi:10.1097/ IJG.0000000000001463
20. Frank P.G., Woodman S.E., Park D.S., Lisanti M.P. Caveolin, caveolae, and endothelial cell function. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2003; 23 (7): 1161–8. doi:10.1161/01.ATV.0000070546.16946.3A
21. Parton R.G., McMahon K.A., Wu Y. Caveolae: Formation, dynamics, and function. Curr. Opin. Cell Biol. 2020; 65: 8–16. doi:10.1016/j.ceb.2020.02.001
22. Simionescu M., Popov D., Sima A. Endothelial transcytosis in health and disease. Cell Tissue Res. 2009; 335 (1): 27–40. doi:10.1007/s00441-008-0688-3
23. Ayloo S., Gu C. Transcytosis at the blood-brain barrier. Curr. Opin. Neurobiol. 2019; 57: 32–38. doi:10.1016/j.conb.2018.12.014
24. Zhao Z., Nelson A.R., Betsholtz C., Zlokovic B.V. Establishment and dysfunction of the blood-brain barrier. Cell. 2015; 163: 1064–78. doi: 10.1016/j. cell.2015.10.067
25. Ben-Zvi A., Lacoste B., Kur E., et al. Mfsd2a is critical for the formation and function of the blood-brain barrier. Nature. 2014; 509: 507–11. doi: 10.1038/ nature13324
26. Chow B.W., Gu C. Gradual suppression of transcytosis governs functional bloodretinal barrier formation. Neuron. 2017; 93 (6): 1325–33.e3. doi:10.1016/j.neuron.2017.02.043
Рецензия
Для цитирования:
Бгатова Н.П., Обанина Н.А., Еремина А.В., Трунов А.Н., Черных В.В. Структура сосудистого русла и интерстиция сетчатки глаза человека при терминальной стадии первичной открытоугольной глаукомы. Российский офтальмологический журнал. 2022;15(2 (Прил)):121-128. https://doi.org/10.21516/2072-0076-2022-15-2-supplement-121-128
For citation:
Bgatova N.P., Obanina N.A., Eremina A.V., Trunov A.N., Chernykh V.V. The structure of human retinal vasculature and interstitium in the terminal stage of primary openangle glaucoma. Russian Ophthalmological Journal. 2022;15(2 (Прил)):121-128. (In Russ.) https://doi.org/10.21516/2072-0076-2022-15-2-supplement-121-128